allgemeiner Name: gefleckter Gurkenkäfer wissenschaftlicher Name: Diabrotica undecimpunctata howardi Barber (Insecta: Coleoptera: Chrysomelidae)

Der gefleckte Gurkenkäfer, Diabrotica undecimpunctata howardi Barber, ist ein bedeutender landwirtschaftlicher Schädling Nordamerikas. Ein anderer Name für den gefleckten Gurkenkäfer ist der südliche Maiswurzelwurm (Bessin 2010). Viele Diabrotica-Arten schädigen Feldfrüchte, insbesondere Mais (Zea mays L.), was diese Käfer zu einem wichtigen landwirtschaftlichen Problem macht. Aufgrund der unterirdischen Natur ihrer Larven sind diese Insekten schwer und teuer zu kontrollieren (Krysan und Miller 1986).

Abbildung 1. Der gefleckte Gurkenkäfer, Diabrotica undecimpunctata howardiae. Foto von James Castner, Abteilung für Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

In Florida greifen drei Hauptarten von Gurkenkäfern Kürbisgewächse an. Gefleckter Gurkenkäfer ist häufiger in Nordflorida, während der gebänderte Gurkenkäfer (Diabrotica balteata, Abbildung 2) häufiger in Südflorida vorkommt. Der gestreifte Gurkenkäfer (Acalymma vittatum) kann auch in einigen Gebieten gefunden werden, ist aber nicht sehr häufig (Webb 2010). Gefleckter Gurkenkäfer überwintert in südlichen Staaten und verbreitet sich jährlich in nördlichen Staaten (Capinera 2008). Die Käfer sind ein großes Problem für Melone (muskmelon) (Cucumis melo L.) und Gurke (Cucumis sativus L.), aufgrund ihrer Fähigkeit, die Bakterien zu bekämpfen, die die bakterielle Welke von Kürbisgewächsen verursachen (Bessin 2010).

Abbildung 2. Larvaler und adulter Gurkenkäfer, Diabrotica balteata LeConte. Foto von Lyle Buss, Abteilung für Entomologie und Nematologie, Universität von Florida.

Verbreitung (Zurück nach oben)

Gefleckte Gurkenkäfer sind einheimische Insekten, die in den Vereinigten Staaten von Mexiko bis Kanada verbreitet sind, obwohl sie in südlichen Regionen am häufigsten vorkommen und zerstörerisch sind (Capinera 2008, Day 2009). Diese Käfer sind in sandigen Böden nicht störend (Sorensen 1999).

Beschreibung und Lebenszyklus (Zurück nach oben)

Unverheiratete Falter überwintern unter Laub und Geröll rund um Wälder und Gebäude. Erwachsene verlassen ihre Verstecke Ende März und Frauen Eiablage von Ende April bis Anfang Juni. Larven ernähren sich von Wurzeln und Stängeln unter dem Boden, wo sie zwei bis vier Wochen reifen, bevor sie sich verpuppen. Unreife Stadien verursachen Pflanzenschäden durch Bohren in Pflanzenstängelbasis und Wurzeln (Brust und House 1990, Capinera 2008). Erwachsene der ersten Generation treten von Ende Juni bis Anfang Juli auf. Im Allgemeinen gibt es zwei Generationen pro Jahr, aber eine einzige Generation wurde in Oregon und drei in Südkalifornien und Alabama gemeldet. Ungefähr sechs bis neun Wochen sind erforderlich, um einen Lebenszyklus abzuschließen. Gefleckter Gurkenkäfer kann zwei und manchmal eine teilweise dritte Generation pro Jahr durchlaufen (Sorensen 1999).

Eier: Käfer werden Mitte des Frühlings aktiv und fangen schnell an, Wirtspflanzen für die Fütterung und Eiablage zu finden. Weibchen Eiablage im gesamten Feld und Eier schlüpfen in der Regel innerhalb von 6-9 Tagen (Webb 2010, Alston und Worwood 2008) und kann bis zu 30 Tage mit unter niedrigen Temperaturbedingungen (Capinera 2008) dauern. Eier sind gelb, oval geformt, in Gruppen von 25-50 unterhalb der Blattoberfläche gelegt und messen etwa 0,7 mm lang und 0,5 mm breit (Capinera 2008, Sorensen 1999). Erwachsene Weibchen legen Eier in Bodenspalten an oder in der Nähe der Basis von Kürbisgewächsen ab. Frisch gelegte Eier sind für ihr Überleben vollständig von der Bodenfeuchtigkeit abhängig (Krysan 1976). Nach dem Schlüpfen der Eier ernähren sich die Larven von Pflanzenwurzeln (Bessin 2010, Capinera 2008).

Larven: Reife Larven sind wurmartig und fast 12 mm lang. Sie haben einen schlanken, weißen Körper mit drei Paaren langer, brauner Beine. Larven haben eine braune Kopfkapsel von 0,3, 0,4 und 0,6 mm Breite für das erste, zweite und dritte Stadium (Capinera 2008). Eine dunkelbraune Platte befindet sich auf der dorsalen Seite des letzten Larvensegments (Alston und Worwood 2008, Sorensen 1999, Webb 2010). Die Larven benötigen sieben, fünf und vier Tage für die Entwicklung des ersten, zweiten und dritten Stadiums (Capinera 2008) bzw. insgesamt 2-3 ½ Wochen für die vollständige Larvenentwicklung (Webb 2010). Die Larve der letzten Stufe baut eine kleine Kammer im Boden auf und verpuppt sich in dieser Kammer (Alston und Worwood 2008).

Abbildung 3. Larven des gefleckten Gurkenkäfers, Diabrotica undecimpunctata howardiae. Foto von Clemson University – USDA Cooperative Extension Slide Series, Bugwood.org .

Puppen: Puppen sind anfangs weiß, werden aber mit zunehmendem Alter gelblich und sehen aus wie Erwachsene. Puppen messen etwa 7,5 mm lang und 4,5 mm breit. Ein Paar kräftige Stacheln befindet sich an der Spitze des Abdomens und kleinere Stacheln befinden sich auf der dorsalen Seite anderer Abdomensegmente (Capinera 2008). Die Puppenzeit variiert zwischen 6 und 10 Tagen (Capinera 2008, Webb 2010).

Erwachsene: Der gefleckte Gurkenkäfer ist 6,4 mm lang und gelbgrün mit 12 schwarzen Flecken auf den Elytra (Vorderflügeln) (Alston und Worwood 2008, Bessin 2010, Capinera 2008, Sorensen 1999, Webb 2010). Der Kopf und die Beine sind schwarz und die schwarzen Antennen mit Perlen sind etwa 1,6 mm lang (Sorensen 1999). Erwachsene sind am Morgen und am späten Nachmittag am aktivsten (Webb 2010). Der Käfer überwintert im Erwachsenenstadium in der Nähe von Gebäuden, Holzparzellen oder in Zaunreihen (Bessin 2010). Überwinternde Erwachsene werden aktiv, sobald die Temperatur 15-20 ° C erreicht Capinera (2008) berichtete, dass Erwachsene langlebig sind: 60 tage im Sommer und bis zu 200 tage im Winter. Erwachsene beginnen 2-3 Wochen nach dem Auflaufen mit der Eiablage.

Schaden (Zurück nach oben)

Diese Käfer verursachen landwirtschaftliche Schäden, indem sie sich von Wurzeln, Sämlingen, Blüten und Blättern ernähren und Krankheiten übertragen. Es wurde berichtet, dass die Fütterung von Erwachsenen mit Kürbisgewächsen oder Transplantaten zu Welken und Ertragseinbußen führt. Larven ernähren sich von Wurzeln und tunneln durch Stängel (Sorensen 1999). Die Larven können kleine Pflanzen stark schädigen, große Pflanzen mit voll entwickelten Wurzelsystemen jedoch weniger (Bessin 2010, Webb 2010). Die Fütterung durch Larven kann die Inzidenz der Fusarienwelkekrankheit erhöhen (Capinera 2008). Die Käfer schädigen auch Ernten, indem sie Narben an Früchten verursachen, was ihren Marktwert verringert (Snyder 2012). Larven verursachen Verletzungen an der Oberfläche oder Rinde von Früchten, die mit dem Boden in Kontakt kommen. Diese Larven werden manchmal auch „Rindenwürmer“ genannt. Früchte von glatthäutigen Melonen sind anfälliger für Schäden durch Käfer, insbesondere bevor die Haut zu schwer zu durchdringen ist (Capinera 2008).

Abbildung 4. Gurke Anthracnose und Fütterungsschäden durch den gefleckten Gurkenkäfer, Diabrotica undecimpunctata howardiae. Foto von Gerald Holmes, Valent USA Corporation, Bugwood.org .

Das Bakterium Pseudomonas lachrymans, das Bakterienwelke verursacht, kann im Winter im Darm von Käfern überleben und ist in Mittel- und Osteuropa ein ernstes Problem Vereinigte Staaten (Alston und Worwood 2008). Im Frühjahr verbreiten diese Käfer das Bakterium entweder durch ihren Kot oder kontaminierte Mundstücke. Fütterungsschäden an jungen Blättern oder Keimblättern führen zu offenen Eintrittspunkten für den Erreger. Das Bakterium vermehrt sich schnell im Gefäßsystem der Pflanze und produziert Blockaden, die in vielen Kürbisgewächsen welken (Bessin 2010) (Wassermelonen sind nicht betroffen) (Webb 2010). Gefleckte Gurkenkäfer übertragen auch andere Krankheiten wie das Kürbismosaikvirus, das Gurkenmosaikvirus, das Bohnenmosaikvirus und das maischlorotische Fleckenvirus (Alston und Worwood 2008).

Abbildung 5. Erwachsener des gefleckten Gurkenkäfers, Diabrotica undecimpunctata howardiae, auf pigweed in einem Gurkenfeld. Foto von Gerald Holmes, Valent USA Corporation, Bugwood.org .

Überwachung (Zurück nach oben)

Überwachung ist ein kritischer Bestandteil jedes Gurkenkäfer-Kontrollprogramms. Pflanzen sollten überwacht werden, sobald sie auftauchen oder transplantiert werden, um schwere Schäden an Sämlingen zu vermeiden. Ein Beispiel für einen Monitoringplan wäre, fünf Pflanzen an fünf Stellen im Feld zu überwachen (insgesamt 25 Pflanzen) und die durchschnittliche Anzahl der Käfer pro Pflanze zu berechnen. Kontrollmaßnahmen werden empfohlen, wenn die Anzahl fünf oder mehr pro reife Pflanze überschreitet. Kontrollmaßnahmen sollten sofort befolgt werden, wenn an jungen Pflanzen inakzeptable Käferschäden auftreten (Alston und Worwood 2008).

Management (Zurück nach oben)

In der kommerziellen Melonen- oder Gurkenproduktion ist eine frühzeitige Behandlung für das Käfermanagement von entscheidender Bedeutung. Die Forschung muss fokussiert und koordiniert werden, um biologische Bekämpfungsstrategien für Gurkenkäfer zu beschleunigen (Toepfer et al. 2009).

Biologische Kontrolle: Einige der wichtigen natürlichen Feinde, die Gurkenkäfer angreifen, sind Tachiniden (Celatoria diabrotica (Shimer)), Pilze (Beauveria) und Nematoden (Howardula benigna (Cobb)) (Capinera 2008). In Utah sind Biokontrollmittel, die Gurkenkäfer angreifen, Soldatenkäfer, Laufkäfer, Braconid Wespen, Tachinid Fliegen und entomopathogene Nematoden. Nützliche Insekten können Erwachsene, Eier und Larven an Pflanzen oder an der Bodenoberfläche angreifen. Es wurde festgestellt, dass entomopathogene Nematoden Larven und Puppen von Käfern im Boden unterdrücken (Alston und Worwood 2008).Eine vielfältige Gemeinschaft von Raubtieren (Erntemänner oder „Daddy Long Legs“, Boden- und Rove-Käfer, verschiedene Arten von Spinnen, Raubmilben und Fledermäuse) kann für die biologische Bekämpfung von Käfern nützlich sein, anstatt sich nur auf eine Art zu verlassen (Snyder 2012). Es gibt keine soliden Beweise dafür, dass Krankheitserreger adulte Käfer wirksam bekämpfen, aber pilzpathogene und entomopathogene Nematoden sind kommerziell erhältlich, um Larven zu bekämpfen. Diese Bio-Pestizide und ihre bodentränkenden Formulierungen haben eine gewisse Wirkung gegen Gurkenkäferlarven im Boden gezeigt (Choo et al 1996, Ellers-Kirk et al. 2000, Reed et al. 1986).Kulturkontrolle: Pflanz- und Saatraten: Frühes Pflügen (das unerwünschte Pflanzen entfernt und die Eiablage verhindert), verzögertes Pflanzen und hohe Saatraten tragen dazu bei, die Auswirkungen dieser Käfer zu minimieren (Sorensen 1999). Vermeiden Sie es, Kürbisfrüchte in der Nähe bevorzugter Wirtspflanzen von Käferlarven (z. B. Bohnen, Mais, kleine Körner und andere Gräser und Unkräuter) anzupflanzen (Alston and Worwood 2008). Das Pflanzen kann verzögert werden, bis sich die Käfer bereits zerstreut und die meisten ihrer Eier abgelegt haben. Diese Taktik kann helfen, den Bedarf an Insektiziden zu reduzieren (Capinera 2008).

Zwischenfrüchte, Abdeckungen und Siebe: Für kleine Kürbisgewächse (z. B. für Hausgärten) können kleine Pflanzen mit mechanischen Mitteln geschützt werden. Reihenabdeckungen, Siebe oder Zapfen um kleine Pflanzen sind nützlich, um Käfer fernzuhalten (Bessin 2010). Es wurde berichtet, dass eine Kombination von Begleitpflanzen wie Rettich (Raphanus sativus L.), Rainfarn (Tanacetum vulgare L.) und Kapuzinerkresse (Tropaeolum spp. L.) und Aluminium-Kunststoffmulch erhöhten den Melonenertrag und die Rebbedeckung und reduzierten die Gurkenkäferpopulationen. Die Verwendung von Reihenkulturen wie Buchweizen (Fagopyrum esculentum Moench), Cowpea (Vigna unguiculata (L.) und Sweetclover (Melilotus officinalis (L.)) war auch bei der Bekämpfung von Gurkenkäferpopulationen wirksam, indem nützliche Insekten angezogen wurden, was wiederum den Melonenertrag erhöhte (Cline et al. 2008, Simon und Synder 2005).

Mulchen: Weniger gefleckte Gurkenkäfer wurden auf Zucchinipflanzen auf Parzellen gefunden, auf denen Sonnenhanf (Crotalaria juncea L.) als lebender Mulch eingepflanzt wurde, als auf Parzellen mit nacktem Boden (ohne Sonnenhanf) (Hinds and Hooks 2013). Es wurde berichtet, dass Aluminiumplastikmulchen Käfer und Blattläuse wirksam von Pflanzen abwehren. Die Verwendung von Mulch und Tropfbewässerung hilft, die Bodenfeuchtigkeit unter Früchten zu reduzieren und die Käferfütterung zu reduzieren (Alston und Worwood 2008). Eine geringere Gurkenkäferdichte wurde bei Gurkenpflanzen gefunden, die in reich gemulchten Böden angebaut wurden, verglichen mit Böden mit weniger organischer Substanz (Yardim et al 2006). Dies könnte daran liegen, dass organisches Material eine nützliche Bodenmikroorganismengemeinschaft fördert, die die inneren Abwehrkräfte der Pflanze auslöst (Zehnder et al. 1997).Strohmulch war auch in vielerlei Hinsicht wirksam bei der Bekämpfung von Käfern: Verlangsamung der Käferbewegung, Zuflucht für Raubtiere (Wolfsspinnen) und Nahrung für Springschwänze und andere Insekten (Snyder und Wise 2000, Williams und Wise 2003. Zersetzer (z. B. Springschwänze) sind wichtige Nicht-Schädlingsbeute für Spinnen und helfen, Spinnenpopulationen zu stärken (Halaj und Wise 2002). Bei der Verwendung von Strohmulch ist darauf zu achten, dass er frei von Unkräutern und Herbizidrückständen ist.

Fallenkulturen, Köder und Hygiene: Der Zweck des Fangens besteht darin, Käfer durch attraktive Farben und Gerüche von der „Hauptfrucht“ wegzulocken. Die Pflanzen der Familie der Kürbisgewächse setzen hohe Konzentrationen von Cucurbitacin und anderen flüchtigen Stoffen frei, um sich gegen Pflanzenfresser zu verteidigen. Diese Chemikalien sind jedoch für Gurkenkäfer attraktiv, so dass diese Pflanzen als Fallenkulturen verwendet werden können. Fallkulturen sollten zwei Wochen vor den Hauptkulturen entlang der Grenze oder des Streifens neben den Hauptkulturen gepflanzt werden. Luna und Xue (2009) berichteten, dass Feldränder die bevorzugten Bereiche sind, in denen sich Gurkenkäfer ansammeln (Luna und Xue 2009). Aufgrund des Timings werden Käfer zuerst von der Fallenfrucht und nicht von der Hauptfrucht angezogen. Behandeln Sie die Fallenkulturen mit Insektiziden, bevor die Erwachsenen Eier legen. Fallen können mit verschiedenen Arten von Pheromonen, Kairomonen, botanischen Pestiziden oder Lockstoffen angelockt werden, die dazu beitragen, Käferpopulationen unter Kontrolle zu halten (Alston und Worwood 2008). Köder oder Lockstoffe sind zum Erkennen von Käfern bestimmt, wenn diese eine geringe Dichte haben oder schwer zu lokalisieren sind. Indol, Zimtaldehyd allein oder in Kombination mit Trimethoxybenzol sind attraktive Kairomone und wurden experimentell unter Feldbedingungen verwendet, um Käfer anzulocken (Capinera 2008). Webb (2010) und Capinera (2008) berichteten, dass Felder frei von jeglicher Art von Unkraut und Gräsern sein sollten.

Pflanzenresistente Sorten: Gurkenkäfer werden durch die Chemikalie Cucurbitacin von Wirtspflanzen angezogen. Diese Chemikalie wird zur Abwehr weniger spezialisierter Pflanzenfresser eingesetzt und verleiht Kürbisgewächsen einen bitteren Geschmack (Deheer und Tallamy 1991). Diese Käfer nehmen Cucurbitacin auf, und es wird in ihren Körper eingebaut und macht sie für Raubtiere unangenehm, was dazu beiträgt, Schutz vor Raubtieren und Parasitioiden zu erhalten (Gould und Massey, 1984, Tallamy et al. 1998). Daher sollten Züchter Cucurbit-Sorten mit niedrigeren Cucurbitacin-Spiegeln auswählen, um ihre Attraktivität für Gurkenkäfer zu verringern.Organische Chemikalien: Kaolinton, Pyrethrum und Spinosad (nicht alle Formulierungen von Spinosad basieren auf organischer Basis) sind einige der organischen Chemikalien, mit denen Gurkenkäfer in gewissem Maße bekämpft werden können (Snyder 2012).Chemische Kontrolle: Es ist am besten, Insektizide mit anderen Managementoptionen wie kultureller und biologischer Kontrolle für ein langfristiges Management zu kombinieren. Es ist auch wichtig, die Chemikalien mit unterschiedlichen Wirkweisen zu rotieren, um die Entwicklung von Pestizidresistenzen bei Käfern zu vermeiden (Alston und Worwood 2008). Käfer sind im Frühjahr am aktivsten, daher kann die Anwendung von Blattinsektiziden zu dieser Jahreszeit zweimal pro Woche erforderlich sein (Bessin 2010). Im Gegensatz zu den meisten Kürbisgewächsen ist Wassermelone nicht anfällig für Welkenkrankheiten (Webb 2010), Schutz ist nur erforderlich, wenn die Käferpopulation hoch und die Pflanzen klein sind (Bessin 2010). Eine Blattinsektizidanwendung im Keimblattstadium behindert die Käferfütterung. Je nach Käferintensität können zusätzliche Blattanwendungen erforderlich sein, um Gurkenmosaik und bakterielle Welkenkrankheiten zu verhindern (Sorensen 1999).

Ausgewählte Referenzen (Zurück nach oben)

• Alston DG, Worwood DR. 2008. Westlicher gestreifter Gurkenkäfer, westlicher gefleckter Gurkenkäfer (Acalymma trivitatum und Diabrotica undecipunctata undecipunctata). Utah Schädlinge Fact Sheets. HNO-118-08. Utah State University Erweiterung und Utah Plant Pest Diagnostic Laboratory. (31. März 2020)
• Bessin R. 2010. Gurkenkäfer. ENTFACT-311. Hochschule für Landwirtschaft, Ernährung und Umwelt, Universität von Kentucky, Lexington, KY. (31. März 2020)
• Brust GE, Haus GJ. 1990. Einfluss von Bodentextur, Bodenfeuchtigkeit, organischer Belag und Unkräutern auf die Eiablagepräferenz des südlichen Maiswurzelwurms (Coleoptera: Chrysomelidae). Umweltentomologie 19: 966-971.In:Capinera JL. 2008. Gefleckter Gurkenkäfer oder südlicher Maiswurzelwurm, Diabrotica undecimpunctata Mannerheim (Coleoptera: Chrysomelidae). Enzyklopädie der Entomologie 3519-3522.
• Choo HY, Koppenhofer AM, Kaya HK. 1996. Kombination zweier entomopathogener Nematodenarten zur Unterdrückung eines Insektenschädlings. Zeitschrift für wirtschaftliche Entomologie 89: 97-103.Cline GR, Sedlacek JD, Hillman SL, Parker SK, Silvernail AF. 2008. Organisches Management von Gurkenkäfern in der Wassermelonen- und Moschusmelonenproduktion. HortTechnology 18: 436-444.
• Tag E. 2009. Gurkenkäfer. Virginia Corporate Extension und Virginia State University, WERDEN. (31. März 2020)
• Deheer CJ, Tallamy DW. 1991. Affinität von gefleckten Gurkenkäferlarven (Coleoptera: Chrysomelidae) zu Cucurbitacinen. Umweltentomlogie 20: 1173-1175.
• Ellers-Kirk CD, Fleischer SJ, Snyder RH, Lynch JP. 2000. Potenzial entomopathogener Nematoden zur biologischen Bekämpfung von Acalymma vittatum (Coleoptera: Chrysomelidae) in Gurken, die in konventionellen und organischen Bodenbewirtschaftungssystemen angebaut werden. Zeitschrift für wirtschaftliche Entomologie 93: 605-612.
• Gould F, Massey A. 1984. Cucurbitacine und Prädation des gefleckten Gurkenkäfers, Diabrotica undecimpunctata howardi. Entomologia Experimentalis et Applicata 36: 273-278.
• Halaj J, Weise DH. 2002. Auswirkungen einer detritalen Subvention auf trophische Kaskaden in einem terrestrischen Nahrungsnetz. Ökologie 83: 3141-3151.
• Hinds J, Haken CRR. 2013. Populationsdynamik von Arthropoden im Sunn-Hemp Zucchini Interplanting System. Pflanzenschutz 53: 6-12.
• Krysan JL. 1976. Feuchtigkeitsbeziehungen des Eies des südlichen Maiswurzelwurms, Diabrotica undecimpunctata howardi (Coleoptera: Chrysomelidae). Entomologia Experimentalis et Applicata 20: 154-162.
• Krysan J, Miller TA. 1986. Methoden der Untersuchung von Pest Diabrotica. s. 260. In: Springer- Verlag, NY.
• J.S., J.S., 2009. Aggregationsverhalten des westlichen gefleckten Gurkenkäfers (Coleoptera: Chrysomelidae) in Gemüseanbausystemen. Umweltentomologie 38: 809-814.
• Pedersen AB, Godfrey LD. 2011. Feld- und Gemüsekulturen als Wirte des Larven-Gurkenkäfers (Coleoptera: Chrysomelidae). Umweltentomologie 40: 633-638.
• Reed DK, Reed GL, Creighton CS. 1986. Einführung von entomogenen Nematoden in Rieselbewässerungssysteme zur Bekämpfung des gestreiften Gurkenkäfers (Coleoptera, Chrysomelidae). Zeitschrift für wirtschaftliche Entomologie 79: 1330-1333.
• Simon M., Snyder J. 2005. Organisches Management von Gurkenkäfern in Kürbisgewächsen. Zuschüsse und Bildung zur Förderung von Innovationen in der nachhaltigen Landwirtschaft. SARE-Projekt-LS01-127. (31. März 2020)
• Snyder W. 2012. Management von Gurkenkäfern in Systemen des ökologischen Landbaus. Cornell University Cooperative Erweiterung. (31 März 2020)
• Snyder WIR, Weise DH. 2000. Antipredator-Verhalten von gefleckten Gurkenkäfern (Coleoptera: Chrysomelidae) als Reaktion auf Räuber, die unterschiedliche Risiken darstellen. Umweltentomologie 29: 35-42.
• Tallamy DW, Whittington DP, Defurio F. 1998. Sequestrierte Cucurbitacine und Pathogenität von Metarhizium anisopliae (Moniliales: Moniliaceae) an gefleckten Gurkenkäfereiern und Larven (Coleoptera: Chrysomelidae). Umweltentomologie 27: 366-372.
• Toepfer S, Haye T, Erlandson M, Goettel M, Lundgren JG, Kleespies RG, Weber DC, Cabrera Walsh G, Peters A, Ehlers R-U, Strasser H, Moore D, Keller S, Vidal S, Kuhlmann U. 2009. Ein Überblick über die natürlichen Feinde von Käfern im Unterstamm Diabroticina (Coleoptera: Chrysomelidae): Implikationen für ein nachhaltiges Schädlingsmanagement. Biocontrol Wissenschaft und Technologie 19: 1-65.
• Webb S. 2010. Insektenmanagement für Kürbisgewächse (Gurke, Kürbis, Melone und Wassermelone). ENY-460. Abteilung für Entomologie und Nematologie, Florida Cooperative Extension Service, IFAS, Universität von Florida, Gainesville, FL. (31. März 2020)
• Williams JL, Wise DH. 2003. Vermeidung von Wolfsspinnen (Araneae: Lycosidae) durch gestreifte Gurkenkäfer (Coleoptera: Chrysomelidae): Labor- und Feldstudien. Umweltentomologie 32: 633-640
• Yardim EN, Arancon NQ, Edwards CA, Oliver TJ, Byrne RJ. 2006. Unterdrückung von Tomatenhornwürmern (Manduca quinquemaculata) und Gurkenkäfern (Acalymma vittatum und Diabotrica undecimpunctata) und Schädigung durch Vermicomposts. Pedobiologia 50: 23-29.
• Zehnder G, Kloepper J, Yao CB, Wei G. 1997. Induktion einer systemischen Resistenz in Gurken gegen Gurkenkäfer (Coleoptera: Chrysomelidae) durch pflanzenwachstumsfördernde Rhizobakterien. Zeitschrift für wirtschaftliche Entomologie 90: 391-396.